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AquaPen藻類葉綠素熒光測量儀

AquaPen手持式藻類葉綠素熒光測量儀設計輕巧,可在現(xiàn)場或實驗室快速、可靠的測量浮游藻類的葉綠素熒光參數(shù)。它配備有藍色和紅色LED發(fā)射器、光學過濾,并準確地聚焦提供高達3000μmol.m-2.s-1的光。

  • 產(chǎn)地: 捷克
  • 型號: AquaPen
  • 名稱: AquaPen藻類葉綠素熒光測量儀

用途:AquaPen手持式藻類葉綠素熒光測量儀設計輕巧,可在現(xiàn)場或實驗室快速、可靠的測量浮游藻類的葉綠素熒光參數(shù)。它配備有藍色和紅色LED發(fā)射器、光學過濾,并準確地聚焦提供高達3000μmol.m-2.s-1的光。藍色激發(fā)光(455 nm)用于海藻葉綠素激發(fā),橙紅色的激發(fā)光(630nm處)用于激發(fā)藻藍色素適用于藍藻測量。AquaPen可以測量自然界水體中低濃度的浮游植物含量,靈敏度高達0.5μg Chl/L,。        測量的數(shù)據(jù)存儲于儀器內(nèi)部,通過藍牙或USB與計算機連接,采用專業(yè)的FluorPen軟件進行數(shù)據(jù)傳輸和分析功能,表格和圖形顯示結果。參數(shù)包括FT,QY,NPQ,OJIP分析,光響應曲線,以及在680和720nm的光密度。        

AquaPen有兩種版本:AquaPen AP 110-C,比色皿式和AquaPen AP 110-P,探頭式。


AquaPen藻類葉綠素熒光測量儀

 

測量原理:利用調(diào)制熒光測量技術,內(nèi)置LED光源,內(nèi)設測量給光程序測量并計算葉綠素熒光響應的各種參數(shù)。


AquaPen藻類葉綠素熒光測量儀 

應用領域:       

藻類光合特性與代謝研究;       

生物與非生物脅迫檢測;       

藻類抗脅迫能力研究;       

湖沼生物學研究;       

海洋學研究;

生物工程學


AquaPen藻類葉綠素熒光測量儀  AquaPen藻類葉綠素熒光測量儀   


技術規(guī)格: 

探頭主體

測量和計算的參數(shù)

F0 ; FT ; FM ; FM ' ; QY; OJIP; NPQ 1,2; LC 1,2,3; OD680 , OD720等20多個參數(shù)

(NPQ1,2:2種給光程序的熒光淬滅曲線;LC1,2,3:3種給光程序的光響應曲線);OD光密度值僅比色皿版本可以測量。

飽和光強度

0~100%可調(diào),最大3000μmol(photon)/m2.s 

光化光強度

10到1000μmol(photon)/m2.s可調(diào)

測量光

藍色和紅色測量光,0~100%可調(diào),最大0.09μmol(photon)/m2/脈沖

激發(fā)光源

AP110-C:藍色 (455 nm)和紅橙色(630 nm)LED,光學過濾,精準聚焦;

AP110-P:藍色 (470 nm),其他波長可選。

探測波長范圍

PIN光電二極管帶667~750nm濾光器

FluorPen軟件

1.1版本,Windows 7或更高

存儲容量

最大16MB

數(shù)據(jù)存儲容量

最大149000個數(shù)據(jù)點

顯示

2×8字符LCD顯示屏

按鍵

密封2鍵

自動關機

無操作5分鐘后自動關機

電源

可充電鋰電池,2000mAh

電池電量

典型情況下可連續(xù)操作48個小時,低電量LCD顯示

尺寸

165 mm×65 mm×55 mm

重量

290克

樣品固定器

AP110-C:4ml比色皿;

AP110-P:潛水式光學探頭。

工作環(huán)境

溫度0~+50℃,相對濕度0~95%(非冷凝)

存儲環(huán)境

溫度-10~+60℃,相對濕度0~95%(非冷凝)



圖片關鍵詞

案例介紹:

案例1:高溫脅迫后,微球藻在生物反應器內(nèi)熒光參數(shù)的恢復。

圖片關鍵詞


隨著恢復時間的延長,NPQ值逐漸降低,同時Fv’/Fm’增加,表明微球藻光合活性得到恢復。 

案例2:PAHs(多環(huán)芳香烴,致癌物)的濃度及處理時間對兩個不同樣地的浮游藻類光合活性(Fv/Fm)的影響


圖片關鍵詞


毒性培養(yǎng)24h后,浮游藻類光合活性受到影響。兩個地點的最高濃度實驗組的Fv/Fm明顯下降(從0.65分別下降至0.24和0.4)。其中Thau地區(qū)的藻類光合活性始終沒有恢復,表明PSII系統(tǒng)受到不可逆損傷;Bizerte地區(qū)的經(jīng)120h后完全恢復。 


近期發(fā)表文獻:

GOIRIS K., VAN COLEN W., WILCHES I. ET AL. (2015): Impact of nutrient stress on antioxidant production in three species of microalgae. Algal Research. Volume 7, Pages 51-57. DOI:10.1016/j.algal.2014.12.002;

DE MARCHIN T., GHYSELS B., NICOLAY S. ET AL. (2014) Analysis of PSII antenna size heterogeneity of Chlamydomonas reinhardtii during state ransitions. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics, Volume 1837, Pages 121-130. DOI:10.1016/j.bbabio.2013.07.009;

MALAPASCUA J. R. F., JEREZ C. G., SERGEJEVOVá M. ET AL. (2014). Photosynthesis monitoring to optimize growth of microalgal mass cultures: application of chlorophyll fluorescence techniques. Aquatic Biology; Volume 22, Pages 123–140. DOI: 10.3354/ab00597; ?SALEH M. M., MATORIN D. N., ZAYADAN B. K. ET AL. (2014). Differentiation between two strains of microalga Parachlorella kessleriusing modern spectroscopic method. Botanical Studies, Pages 55-53. DOI: 10.1186/s40529-014-0053-7;

THRANE J. E., HESSEN D. O. AND ANDERSEN T. (2014). The Absorption of Light in Lakes: Negative Impact of Dissolved Organic Carbon on Primary Productivity; Ecosystems. Volume 17: Pages 1040–1052. DOI: 10.1007/s10021-014-9776-2;

THOMMER G., LEYNAERT A., KLEIN C. ET AL. (2013). Phytoplankton phosphorus limitation in a North Atlantic coastal ecosystem not predicted by nutrient load. Journal of Plankton Research. 0(0). Pages 1 – 13. DOI:10.1093/plankt/fbt070;

LAZáR D, MURCH S. J., BEILBY M. J. ET AL. (2013). Exogenous melatonin affects photosynthesis in characeae Chara australis; Plant Signaling and Behavior. Volume 8(3): e23279. DOI: 10.4161/psb.23279 


產(chǎn)地:捷克


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