用途:AquaPen手持式藻類葉綠素熒光測量儀設計輕巧,可在現(xiàn)場或實驗室快速、可靠的測量浮游藻類的葉綠素熒光參數(shù)。它配備有藍色和紅色LED發(fā)射器、光學過濾,并準確地聚焦提供高達3000μmol.m-2.s-1的光。藍色激發(fā)光(455 nm)用于海藻葉綠素激發(fā),橙紅色的激發(fā)光(630nm處)用于激發(fā)藻藍色素適用于藍藻測量。AquaPen可以測量自然界水體中低濃度的浮游植物含量,靈敏度高達0.5μg Chl/L,。 測量的數(shù)據(jù)存儲于儀器內(nèi)部,通過藍牙或USB與計算機連接,采用專業(yè)的FluorPen軟件進行數(shù)據(jù)傳輸和分析功能,表格和圖形顯示結果。參數(shù)包括FT,QY,NPQ,OJIP分析,光響應曲線,以及在680和720nm的光密度。
AquaPen有兩種版本:AquaPen AP 110-C,比色皿式和AquaPen AP 110-P,探頭式。
測量原理:利用調(diào)制熒光測量技術,內(nèi)置LED光源,內(nèi)設測量給光程序測量并計算葉綠素熒光響應的各種參數(shù)。
應用領域:
藻類光合特性與代謝研究;
生物與非生物脅迫檢測;
藻類抗脅迫能力研究;
湖沼生物學研究;
海洋學研究;
生物工程學
技術規(guī)格:
探頭主體 | |
測量和計算的參數(shù) | F0 ; FT ; FM ; FM ' ; QY; OJIP; NPQ 1,2; LC 1,2,3; OD680 , OD720等20多個參數(shù) (NPQ1,2:2種給光程序的熒光淬滅曲線;LC1,2,3:3種給光程序的光響應曲線);OD光密度值僅比色皿版本可以測量。 |
飽和光強度 | 0~100%可調(diào),最大3000μmol(photon)/m2.s |
光化光強度 | 10到1000μmol(photon)/m2.s可調(diào) |
測量光 | 藍色和紅色測量光,0~100%可調(diào),最大0.09μmol(photon)/m2/脈沖 |
激發(fā)光源 | AP110-C:藍色 (455 nm)和紅橙色(630 nm)LED,光學過濾,精準聚焦; AP110-P:藍色 (470 nm),其他波長可選。 |
探測波長范圍 | PIN光電二極管帶667~750nm濾光器 |
FluorPen軟件 | 1.1版本,Windows 7或更高 |
存儲容量 | 最大16MB |
數(shù)據(jù)存儲容量 | 最大149000個數(shù)據(jù)點 |
顯示 | 2×8字符LCD顯示屏 |
按鍵 | 密封2鍵 |
自動關機 | 無操作5分鐘后自動關機 |
電源 | 可充電鋰電池,2000mAh |
電池電量 | 典型情況下可連續(xù)操作48個小時,低電量LCD顯示 |
尺寸 | 165 mm×65 mm×55 mm |
重量 | 290克 |
樣品固定器 | AP110-C:4ml比色皿; AP110-P:潛水式光學探頭。 |
工作環(huán)境 | 溫度0~+50℃,相對濕度0~95%(非冷凝) |
存儲環(huán)境 | 溫度-10~+60℃,相對濕度0~95%(非冷凝) |
案例介紹:
案例1:高溫脅迫后,微球藻在生物反應器內(nèi)熒光參數(shù)的恢復。
隨著恢復時間的延長,NPQ值逐漸降低,同時Fv’/Fm’增加,表明微球藻光合活性得到恢復。
案例2:PAHs(多環(huán)芳香烴,致癌物)的濃度及處理時間對兩個不同樣地的浮游藻類光合活性(Fv/Fm)的影響
毒性培養(yǎng)24h后,浮游藻類光合活性受到影響。兩個地點的最高濃度實驗組的Fv/Fm明顯下降(從0.65分別下降至0.24和0.4)。其中Thau地區(qū)的藻類光合活性始終沒有恢復,表明PSII系統(tǒng)受到不可逆損傷;Bizerte地區(qū)的經(jīng)120h后完全恢復。
近期發(fā)表文獻:
GOIRIS K., VAN COLEN W., WILCHES I. ET AL. (2015): Impact of nutrient stress on antioxidant production in three species of microalgae. Algal Research. Volume 7, Pages 51-57. DOI:10.1016/j.algal.2014.12.002;
DE MARCHIN T., GHYSELS B., NICOLAY S. ET AL. (2014) Analysis of PSII antenna size heterogeneity of Chlamydomonas reinhardtii during state ransitions. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics, Volume 1837, Pages 121-130. DOI:10.1016/j.bbabio.2013.07.009;
MALAPASCUA J. R. F., JEREZ C. G., SERGEJEVOVá M. ET AL. (2014). Photosynthesis monitoring to optimize growth of microalgal mass cultures: application of chlorophyll fluorescence techniques. Aquatic Biology; Volume 22, Pages 123–140. DOI: 10.3354/ab00597; ?SALEH M. M., MATORIN D. N., ZAYADAN B. K. ET AL. (2014). Differentiation between two strains of microalga Parachlorella kessleriusing modern spectroscopic method. Botanical Studies, Pages 55-53. DOI: 10.1186/s40529-014-0053-7;
THRANE J. E., HESSEN D. O. AND ANDERSEN T. (2014). The Absorption of Light in Lakes: Negative Impact of Dissolved Organic Carbon on Primary Productivity; Ecosystems. Volume 17: Pages 1040–1052. DOI: 10.1007/s10021-014-9776-2;
THOMMER G., LEYNAERT A., KLEIN C. ET AL. (2013). Phytoplankton phosphorus limitation in a North Atlantic coastal ecosystem not predicted by nutrient load. Journal of Plankton Research. 0(0). Pages 1 – 13. DOI:10.1093/plankt/fbt070;
LAZáR D, MURCH S. J., BEILBY M. J. ET AL. (2013). Exogenous melatonin affects photosynthesis in characeae Chara australis; Plant Signaling and Behavior. Volume 8(3): e23279. DOI: 10.4161/psb.23279
產(chǎn)地:捷克